流式细胞术 FoxP3/转录因子固定和透化实验步骤

A. 溶液与试剂

本实验步骤中所需的所有试剂可与我们的 FoxP3/Transcription Factor Fixation/Permeabilization Kit #43481 一起购买 ，或使用下文所列的 货号单独购买。

1. FoxP3/Transcription Factor Fixation/Permeabilization Diluent (1X) (#58766)
2. FoxP3/Transcription Factor Fixation/Permeabilization Concentrate (4X) (#44931)：使用 FoxP3/Transcription Factor Fixation/Permeabilization Diluent (1X) 将所需量稀释成 1X 工作溶液
3. FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer (10X) (#68751)：使用反渗透 去离子 (RODI) 水或同等级别的水将所需量稀释成 1X 工作溶液。用于所有洗涤步骤及 固定后的抗体孵育。

注：在您的实验中加入荧光细胞染料 （包括活性染料、DNA 染料等）时，请参考染料产品页 ，了解建议的实验步骤。访问我们的网站， 了解经流式细胞术验证的细胞染料列表。

B. 固定与透化

注：固定前，应分离贴壁细胞或组织， 使它成为单细胞悬浮液。如果使用全血， 则需在固定前使用 RBC Lysis Buffer (#46232) 裂解红细胞并通过离心分离来洗涤。

注：靶向 CD 标志物或其他细胞外表位的抗体可在固定前添加。 在固定过程中，这些抗体保持与目的靶标的结合。 固定前 可进行一次洗涤，但这不是必须。

注：最优的离心条件与细胞 类型和试剂用量相关。一般，1-5 分钟 150-300 xg 将 足以使细胞沉淀下来。

1. 通过离心使细胞沉淀下来，移除上清液。
2. 将细胞重悬在 1 mL 的 FoxP3/Transcription Factor Fixation/Permeabilization 1X 工作溶液中。 混合以分散细胞团块，防止细胞间发生交联。
3. 在室温 (20-25°C) 下孵育 30-60 分钟。避光。
4. 用足够的 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 离心分离来洗涤。弃去上清液。重复。

C. 免疫染色

注：使用血细胞计数器或其他方法计数细胞。

1. 将所需数目的细胞分装入试管或孔板中。（通常，每次测定 5×10⁵ 至 1×10⁶ 个细胞。）
2. 按建议 稀释倍数用 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 制备的 100 µL 稀释抗体中重悬细胞。请参阅所使用抗体说明书或产品网页， 了解建议的稀释度，或通过滴定确定。
3. 室温 (20-25°C) 孵育 1 小时。避光。
4. 用足够的 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 离心分离来洗涤。弃去上清液。重复。
5. 如果使用荧光素偶联的一抗，则在 200-500 µL 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 中重悬细胞， 并在流式细胞分析仪上进行分析；对于非偶联一抗，继续进行 下一步骤。
6. 在荧光素偶联的二抗溶液中重悬细胞，二抗按建议 的稀释倍数用 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 稀释。
7. 室温 (20-25°C) 孵育 30 分钟。避光。
8. 用足够的 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 离心分离来洗涤。弃去上清液。重复。
9. 在 200-500 µL 1X FoxP3/Transcription Factor Permeabilization Buffer 中重悬细胞，并在流式细胞分析仪上进行分析。

仅供研究使用。不得用于诊断流程。