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蛋白质印迹法实验步骤

A. 溶液与试剂

:利用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。

  1. 20 X 磷酸盐缓冲液 (PBS):(#9808) 配制 1 L 1X PBS:添加 50 mL 20X PBS 至 950 mL dH2O 中,混合。
  2. 10X Tris 盐缓冲液 (TBS):(#12498) 配制 1 L 1X TBS:添加 100 mL 10X 至 900 mL dH2O 中,混匀。
  3. 1X SDS 样品缓冲液:Blue Loading Pack (#7722) 或 Red Loading Pack (#7723);通过添加 1/10 体积的 30X DTT 至 1 体积的 3X SDS 上样缓冲液, 配制新鲜的 3X 还原上样缓冲液。用 dH2O 稀释至 1X。
  4. 10X Tris-Glycine SDS 电泳缓冲液:(#4050) 配制 1 L 1X 电泳缓冲液:将 100 mL 10X 电泳缓冲液加入 900 mL dH2O 中,混匀。
  5. 10X Tris-Glycine 转移缓冲液:(#12539) 配制 1 L 1X 转移缓冲液:将 100 mL 10X 转移缓冲液加入到 200 mL 甲醇 + 700 mL dH2O 中,混匀。
  6. 10X 含 Tween 20 的 Tris 盐缓冲液 (TBST):(#9997) 配制 1 L 1X TBST:添加 100 mL 10X TBST 至 900 mL dH2O 中,混匀。
  7. 脱脂奶粉:(#9999)。
  8. 封闭液:含有 5% w/v 脱脂奶粉的 1X TBST;如果配制 150 mL,将 7.5 g 脱脂奶粉加入到 150 mL 1X TBST 中并混匀。
  9. 洗涤缓冲液:(#9997)1X TBST。
  10. Bovine Serum Albumin (BSA):(#9998)。
  11. 一抗稀释缓冲液:含有 5% BSA 或 5% 脱脂奶粉的 1X TBST(具体使用哪种请参考一抗产品网页的指示) ;如要配制 20 mL,向 20 mL 1X TBST 中添加 1.0 g BSA 或脱脂奶粉,并充分混匀。
  12. 生物素化的蛋白分子量标准品检测包:(#7727)。
  13. Blue Prestained Protein Marker, Broad Range (11-250 kDa):(#59329)。
  14. 印迹膜和纸:(#12369) 本实验步骤 已针对硝酸纤维素膜进行了优化。通常,建议使用 0.2 µm 孔径的膜。
  15. HRP 偶联二抗:抗兔 (#7074);抗小鼠 (#7076)。
  16. 检测试剂:LumiGLO 化学发光试剂和过氧化物 (#7003) 或 SignalFire™ ECL Reagent (#6883)。

B. 蛋白质印迹

配制样品的常规流程。

  1. 添加含有调节因子的新鲜培养基,对细胞进行所需时间的处理。
  2. 吸出培养基;用 1X PBS 洗涤细胞后将PBS吸出。
  3. 加入 1X SDS 样品缓冲液(对于 6 孔板,每孔加入 100 µL;对于直径 10 cm 的平板,加入 500 µL)裂解细胞。立即从板上刮下细胞并将提取物转移至微量离心管 。置于冰上。
  4. 超声裂解10–15秒,完成细胞裂解并剪切 DNA(以减轻样本粘度)。
  5. 加热 20 µL 样本至 95–100°C 5分钟;在冰上冷却。
  6. 用微量离心机离心 5 分钟。
  7. 上样 20 µL 至 SDS-PAGE 凝胶 (10 cm x 10 cm)。
    注:建议上样预染分子量标准品(#59329, 5 µL/泳道)以验证电转移,并上样生物素化的蛋白分子量标准品(#7727, 10 µL/泳道)确定分子量。
  8. 电转移至硝酸纤维素膜 (#12369)。

C. 膜封闭和抗体孵育

:体积适用于 10 cm x 10 cm (100 cm2) 的膜;针对不同尺寸的膜,请对体积作出 相应调整。

一、膜封闭

  1. (可选)转移后,在室温下用 25 mL TBS 洗涤硝酸纤维素膜 5 分钟。
  2. 将膜在室温下于 25 mL 封闭液中孵育 1 小时,同时温和振荡。
  3. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。

二、一抗孵育

根据所用的一抗,继续后续对应的实验步骤。

对于非偶联的一抗

  1. 将膜和一抗(按照产品说明书中建议的适当稀释比例和稀释液配制)置于 10 mL 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
  2. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  3. 将膜与种属匹配的 HRP 偶联二抗(#7074#7076,按 1:2000 的比例)和 Anti-biotin, HRP-linked Antibody(#7075,按 1:1000–1:3000 的比例)于 10 ml 封闭液中室温孵育 1 小时,同时温和振荡, 以检测生物素化蛋白标志物。
  4. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  5. 继续进行检测(D 部分)。

对于 HRP 偶联一抗

  1. 将膜和一抗(按照产品说明书中建议的适当稀释比例配制)置于 10 mL 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
  2. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  3. (可选)在 10 mL 封闭液中用 Anti-biotin, HRP-linked Antibody (#7075,按 1:1000–1:3000 的比例)在室温下孵育 1 小时,同时温和振荡,以检测生物素化蛋白质标志物。
  4. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  5. 继续进行检测(D 部分)。

对于生物素化的一抗

  1. 将膜和一抗(按照产品说明书中建议的适当稀释比例配制)置于 10 mL 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
  2. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  3. 将膜与 Streptavidin-HRP(#3999,按适宜的 稀释比例)于 10 mL 封闭液中在室温下孵育 1 小时,同时温和振荡。 
    注:Streptavidin-HRP 使生物素化蛋白质标志物可视化。无需额外 使用 Anti-Biotin, HRP-Linked Antibody 进行孵育。
  4. 用 15 mL TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  5. 继续进行检测(D 部分)。

D. 蛋白质检测

  1. 用 10 mL LumiGLO(0.5 mL 20X LumiGLO #7003、0.5 mL 20X 过氧化氢和 9.0 mL 纯化水)或 10 mL SignalFire™ #6883(5 mL 试剂 A 和 5 mL 试剂 B)将膜在室温下孵育 1 分钟,同时温和振荡。
  2. 沥干膜上多余的显影液(勿令其干燥),裹在塑料保鲜膜中,然后用 X 射线胶片曝光 。初始 10 秒曝光可以显示合适的曝光时间。
    :由于检测反应的动力学 ,信号在孵育后最强, 后续 2 小时逐渐衰减。