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针对人外周血单核细胞 (PBMC) 中的 FoxP3 的流式细胞术实验步骤

针对:

A. 溶液与试剂

注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水制备溶液。

  1. 20 X 磷酸盐缓冲液 (PBS):( #9808) 为了制备 1 L 1 X PBS:添加 50 ml 20 X PBS 至 950 ml dH2O,然后将其混匀。
  2. 甲醛(无甲醇)。
  3. 2% 甲醛(在 PBS 中稀释的甲醛原液;在实验当天新鲜制备)。
  4. Triton X-100
  5. Ficoll-Paque
  6. 孵育缓冲液:将 0.5 g 牛血清白蛋白 (BSA) (#9998) 溶解在 100 ml 1X PBS 中。4°C 保存。

B. 固定

注:按照制造商的要求,应在固定/通透前对活细胞进行 CD4 和 CD25 抗体表面染色。

  1. 按照制造商说明,通过聚蔗糖密度离心分离从全血中分离出 PBMCs。
  2. 通过离心分离用孵育缓冲液洗涤 2 次。
  3. 在孵育缓冲液中重悬细胞,并以 1 x 106 个细胞/100 µl/样品管的浓度分装细胞。
  4. 按照制造商建议的容量或浓度向测试管添加 CD4 和 CD25 抗体,随后放在冰上孵育 30 分钟。
  5. 添加 2 ml 孵育缓冲液后,通过离心分离进行洗涤。
  6. 吸干上清液后在 500 μl 2% 甲醛中重悬细胞。
  7. 在室温下固定 30 分钟。
  8. 用孵育缓冲液离心洗涤 2 次。

C. 透化

  1. 在 1 ml 0.1% Triton X-100(在 PBS 中按体积分数计量)中重悬细胞。
  2. 在室温下静置 30 分钟。
  3. 用孵育缓冲液离心洗涤 2 次。

D. 免疫染色

  1. 在 100 µl FoxP3 (D6O8C) XP® Rabbit mAb #12632 工作液(在孵育缓冲液中按 1:200 的比例稀释的抗体母液)中重悬细胞沉淀物。
  2. 室温孵育 1 小时。
  3. 用孵育缓冲液离心洗涤 2 次。
  4. 如果使用荧光染料偶联的一抗,则在 500 µl 孵育缓冲液中重悬细胞,并在流式细胞分析仪上进行分析;对于非偶联或生物素化的一抗,继续进行步骤 5。
  5. 在荧光染料偶联的二抗或荧光染料偶联的亲和素中重悬细胞,二抗或亲和素按建议的稀释度在孵育缓冲液中稀释。
  6. 室温孵育 30 分钟。
  7. 用孵育缓冲液离心洗涤 2 次。
  8. 在 500 μl 孵育缓冲液中重悬细胞后用流式细胞分析仪进行分析。
  9. FoxP3 在可针对 CD25 建立的且对 CD4+ T 淋巴细胞设门的二维双参数散点图上描绘。

发布​时间 2013 年 7 月

修订时间 2013 年 10 月